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生物樣品常規超薄切片制備流程

發布時間:2025-04-24 點擊:31
生物樣品常規超薄切片制備流程(一)細胞、細菌等樣品:
1.固定
1)搜集樣品,經緩沖液沖刷后,向樣品中參加 2.5% 戊二醛緩沖固定液(電鏡純度),4℃ 固定 2 小時以上;
2)緩沖液沖刷2到3次,每次5分鐘;
3) 向樣品中參加1%或2%四氧化鋨緩沖固定液進行后固定, 室溫或4℃固定1-3小時;
4)緩沖液沖刷2到3次,每次5分鐘;
2. 脫水
用30%——50%——70%——90%——95%——100%酒精對樣品進行梯度脫水, 每步5到10分鐘;其間100%酒精需求重復2-3次,以確保脫水徹底;
3. 浸透
透射電鏡
用無水環氧丙烷或丙酮置換樣品中酒精,5-10分鐘;然后進行環氧樹脂浸透。(依選用的環氧樹脂種類和配方,嚴厲按配方份額將樹脂與固化劑等混兼并充沛拌和。)每步份額與時刻分別為:
環氧丙烷(丙酮):環氧樹脂= 3:1,1-3小時(室溫)
環氧丙烷(丙酮):環氧樹脂= 1:1,1-3小時(室溫)
環氧丙烷(丙酮):環氧樹脂= 1:3,3小時-過夜(室溫)
環氧樹脂: 12-24小時(室溫)
4. 包埋與聚合
向環氧樹脂中按1.5%-2%份額參加催化劑并混勻后注入包埋模具或膠囊中, 再將樣品按所需的方位擺放在包埋模具或膠囊的樹脂中,然后放入烘箱中聚合。主張先經35℃12小時,再經45℃12小時,然后60℃24小時聚合。
5.切片(略)
6.染色(略)
(二)植物安排(葉片、莖、根等)、真菌:
1.固定
1)收集樣品,經緩沖液沖刷后,將樣品放置入2.5% 戊二醛緩沖固定液(電鏡純度)中。植物安排需抽真空以使固定液充沛進入細胞(肉眼可見葉片等沉入固定液中),4℃固定過夜;
2)緩沖液沖刷2到3次,每次5分鐘;
3) 向樣品中參加1%或2%四氧化鋨緩沖固定液進行后固定, 室溫或4℃固定3-4小時;
4)緩沖液沖刷2到3次,每次5分鐘;
2. 脫水
用30%——50%——70%——90%——95%——100%酒精對樣品進行梯度脫水, 每步20到30分鐘;其間100%酒精需求重復2-3次,以確保脫水徹底;
3. 浸透
用無水環氧丙烷或丙酮置換酒精,20-30分鐘;然后進行樹脂浸透。(依選用的環氧樹脂種類和配方,嚴厲按配方份額將樹脂與固化劑等混兼并充沛拌和。)每步份額與時刻分別為:
環氧丙烷(丙酮):環氧樹脂= 3:1,3小時(室溫)
環氧丙烷(丙酮):環氧樹脂= 1:1,3小時(室溫)
環氧丙烷(丙酮):環氧樹脂= 1:3,3小時-過夜(室溫)
純環氧樹脂: 24-72小時(室溫)
以上各步都在旋轉混合儀上進行搖晃旋轉,以加快浸透。
4. 包埋與聚合
向純環氧樹脂中按1.5%-2%份額參加催化劑并混勻后注入包埋模具或膠囊中, 再將樣品按所需的方位擺放在包埋模具或膠囊的樹脂中,然后放入烘箱中聚合。主張先經35℃12小時,再經45℃12小時,然后60℃24小時聚合。(Spurr樹脂需70℃24小時聚合)。
5.切片(略)
6.染色(略)
(三)活體動物安排:
1.固定
1)對小鼠腦、心臟等安排,用 2.5% 戊二醛和 4% 多聚甲醛混合緩沖固定液對試驗動物進行灌流固定;對肝、肺等其他安排,可在腹腔中滴入上述混合固定液后選材;迅速取出試驗安排,用手術剪或尖利的刀片快速切割為不大于1mm3的安排塊,投入2.5% 戊二醛緩沖固定(電鏡純度)中,4℃或室溫放置2小時以上;
2)緩沖液沖刷2到3次,每次5分鐘;
3) 樣品中投入1%或2%四氧化鋨緩沖固定液中進行后固定, 室溫或4℃固定1-3小時;
4)緩沖液沖刷2到3次,每次5分鐘;
2. 脫水
用30%——50%——70%——90%——95%——100%酒精對樣品進行梯度脫水, 每步5到10分鐘;其間100%酒精需求重復2-3次,以確保脫水徹底;
3. 浸透
用無水環氧丙烷或丙酮置換酒精,5-10分鐘;然后進行環氧樹脂浸透。(依選用的環氧樹脂種類和配方,嚴厲按配方份額將樹脂與固化劑等混兼并充沛拌和。)每步份額與時刻分別為:
環氧丙烷(丙酮):環氧樹脂= 3:1,1-3小時(室溫)
環氧丙烷(丙酮):環氧樹脂= 1:1,1-3小時(室溫)
環氧丙烷(丙酮):環氧樹脂= 1:3,3小時-過夜(室溫)
純環氧樹脂: 12-24小時(室溫)
4. 包埋與聚合
向環氧樹脂中按1.5%-2%份額參加催化劑并混勻后注入包埋模具或膠囊中, 再將樣品按所需的方位擺放在包埋模具或膠囊的樹脂中,然后放入烘箱中聚合。主張先經35℃12小時,再經45℃12小時,然后60℃24小時聚合。
5.切片(略)
6.染色(略)


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